將-80℃保存的重組菌B.subtilis/pHY300PLK-gadB以體積分?jǐn)?shù)0.2%接種至含20μg/mL四環(huán)素的LB液體培養(yǎng)基中,恒溫?fù)u床37℃、200r/min擴(kuò)大培養(yǎng)8~10h,再以體積分?jǐn)?shù)5%轉(zhuǎn)接至含20μg/mL四環(huán)素的TB發(fā)酵培養(yǎng)基中,恒溫?fù)u床37℃、200r/min培養(yǎng)2~3h后分別加入一定濃度的PLP、PL、PN,于恒溫?fù)u床33℃、200r/min進(jìn)行重組蛋白質(zhì)的表達(dá)。發(fā)酵過程中在不同時(shí)間取樣,測0D600。12000r/min離心1min得到菌體和發(fā)酵上清液。將菌體用1mL、50mmol/L、pH5.0的Na2HP04-檸檬酸緩沖液重懸,加入0.6mg/mL溶菌酶,在37℃反應(yīng)30min后置于冰水中超聲破碎,12000r/min離心5min得到破壁上清液和破壁沉淀,使用SDS-PAGE檢測其蛋白質(zhì)。
物溶液配制:0.1mol/L-水谷氨酸鈉和0.15mmol/LPLP溶于50mmol/L、pH4.5的Na2HPO4-檸檬酸緩沖液中,置于4℃避光保存。
反應(yīng)體系:將裝有360uL底物溶液的1.5mLEP管于37℃水浴鍋預(yù)熱10min后,加入40uLGAD粗酶液,在37℃下反應(yīng)4min后,加入600uL、0.2mol/L、pH10的硼酸緩沖液終止反應(yīng),置于沸水中滅活10min。
GABA生成量測定:采用HPLC-OPA氨基酸柱前衍生法檢測GABA生成量。
酶活定義:在反應(yīng)液中,1min催化底物轉(zhuǎn)化生成1umolGABA所需的酶量為一個(gè)活力單位(U)。
本文中重組GAD均指重組菌所產(chǎn)的GAD。
水配制質(zhì)量濃度為127g/L的一水谷氨酸鈉底物(折算成100g/L谷氨酸,以下均以折算后的谷氨酸質(zhì)量濃度進(jìn)行闡述)。在150mL三角錐形瓶中加入20mL底物,加入一定量的濕菌體(在55℃水浴鍋預(yù)處理50min,改善細(xì)胞膜的通透性),反應(yīng)過程中,每隔2h用0.6mol/L的H2SO4和NaOH調(diào)節(jié)pH,使其始終與初始pH一致。在一定溫度、pH下,150r/min水浴搖床中反應(yīng)一段時(shí)間,終止反應(yīng)后進(jìn)行煮沸處理,12000r/min離心5min得上清液,適當(dāng)稀釋并過0.22μm有機(jī)濾膜后用HPLC-OPA柱前衍生法進(jìn)行檢測。
將過濾好的樣品通過HPLC檢測GABA生成量。HPLC色譜條件如下:Agilent1200HPLC色譜儀、Agilent自動(dòng)進(jìn)樣器、GLInertsilODS-3液相柱、Agilent紫外檢測器。流動(dòng)相A:準(zhǔn)確量取995mL純凈水,加入4.52g無水乙酸鈉,攪拌使其充分溶解,再加入5mL四氫呋喃和0.2mL三乙胺,之后用冰乙酸調(diào)節(jié)pH至7.20±0.05,充分混合后用0.22μm無機(jī)纖維素濾膜過濾備用:流動(dòng)相B:準(zhǔn)確量取200mL純凈水,加入4.52g無水乙酸鈉,攪拌使其充分溶解,用冰乙酸調(diào)節(jié)pH至7.20±0.05后,再依次加入400mL色譜純的乙腈和甲醇,用冰乙酸調(diào)節(jié)pH至7.20+0.05,混合后用0.22μm有機(jī)尼龍濾膜過濾備用。梯度洗脫,流量為0.8mL/min,柱溫為40℃。根據(jù)吸收峰面積和GABA標(biāo)準(zhǔn)品峰面積計(jì)算GABA生成量,計(jì)算公式如下:
式中:Y為GABA轉(zhuǎn)化率,%;4為谷氨酸轉(zhuǎn)化生成GABA的實(shí)際質(zhì)量濃度,g/L;T為谷氨酸轉(zhuǎn)化生成GABA的理論質(zhì)量濃度,g/L。
以實(shí)驗(yàn)室保存的質(zhì)粒pET-24a(+)-gadB為模板,擴(kuò)增gadB目的片段,并以質(zhì)粒載體pHY300PLK為模板,擴(kuò)增表達(dá)載體片段。擴(kuò)增得到的產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳檢測,目的基因片段gadB和質(zhì)粒表達(dá)載體pHY300PLK長度約為1428bp和5731bp,與理論堿基大小一致。驗(yàn)證正確后通過ExnaseⅡ連接酶將兩個(gè)基因片段連接再轉(zhuǎn)入E.coliJMl09感受態(tài)細(xì)胞,涂布到LB固體培養(yǎng)基(含氨芐青霉素抗性)后挑取單菌落至LB液體培養(yǎng)基(含氨芐青霉素抗性)中過夜培養(yǎng)。提取質(zhì)粒,酶切驗(yàn)證和測序成功后,將重組質(zhì)粒用電擊轉(zhuǎn)化法導(dǎo)入表達(dá)宿主B.subtilis并涂布到LB固體培養(yǎng)基(含四環(huán)素抗性),之后挑取單菌落至LB液體培養(yǎng)基(含四環(huán)素抗性)中培養(yǎng)8~10h,提取質(zhì)粒后進(jìn)行酶切驗(yàn)證分析。結(jié)果見圖3,分別在5130bp和2100bp處有明顯的條帶,說明重組表達(dá)質(zhì)粒pHY300PLK-gadB在B.subtilis中構(gòu)建成功。
種類輔酶及輔酶前體對重組菌產(chǎn)酶情況的影響重組菌按照1.2.4進(jìn)行搖瓶發(fā)酵產(chǎn)酶,搖瓶發(fā)酵溫度33℃,在重組菌發(fā)酵過程中分別添加輔酶PLP(簡稱GAD-PLP)、輔酶前體PL(簡稱GAD-PL)和PN(簡稱GAD-PN)至終濃度為0.5mmol/L。發(fā)酵結(jié)束后12000r/min離心1min獲得菌體,用超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)進(jìn)行細(xì)胞破碎,12000r/min離心5min得到GAD粗酶液。結(jié)果見圖4,誘導(dǎo)48h后,酶活分別達(dá)到25.40、28.14U/mL和15.55U/mL,是對照GAD-0酶活(16.34U/mL)的1.55、1.72和0.95倍。由此可知,添加0.5mmol/LPN時(shí),酶活相較于對照并無明顯區(qū)別,這是因?yàn)榭莶菅挎邨U菌中缺少PdxH氧化酶,無法通過PLP補(bǔ)救途徑將PN轉(zhuǎn)化為PLP,從而提高GAD酶活力。其次隨著誘導(dǎo)培養(yǎng)時(shí)間的延長,細(xì)胞內(nèi)合成的少量PLP被自身吸收并消耗而無法滿足GAD表達(dá)水平提高的需要。然而向培養(yǎng)基巾添加適量的PLP或PL可以直接或問接通過PLP補(bǔ)救途徑合成PLP,從而提供能夠維持GAD穩(wěn)定的輔酶PLP,促進(jìn)GAD的折疊,提高酶活。鑒于PLP成本高于PL,所以在發(fā)酵過程中選擇添加PL進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
重組菌按照1.2.4進(jìn)行搖瓶發(fā)酵,在過程中添加不同濃度的PL(0.01、0.03、0.05、0.07、0.1、0.2、0.3mmol/L)發(fā)酵培養(yǎng)48h后,12000r/min離心1min獲得菌體,超聲波細(xì)胞破碎機(jī)進(jìn)行細(xì)胞破碎,12000r/min離心5min得到GAD粗酶液,結(jié)果見圖5。隨著PL濃度的增加,GAD酶活也隨之提高,當(dāng)PL濃度為0.1mmol/L時(shí),GAD酶活達(dá)到最高為28.28U/mL。繼續(xù)增加PL的濃度,酶活并未發(fā)生顯著變化,故可知PL的最適添加濃度為0.1mmol/L。圖6為發(fā)酵過程中添加不同濃度PL后的重組GAD蛋白質(zhì)電泳圖,從圖中可見在相對分子質(zhì)量53000的條帶附近有一條清晰的蛋白質(zhì)電泳條帶,符合GAD理論蛋白質(zhì)相對分子質(zhì)量大小。
重組菌按照1.2.4進(jìn)行搖瓶發(fā)酵,在過程中添加0.1mmol/LPL,探究其在不同發(fā)酵時(shí)間(0、12、24、36、48、60h)對重組菌生長(見圖7)和產(chǎn)GAD情況(見圖8)的影響。與GAD-0相比,在發(fā)酵時(shí)問36h左右,PL對菌體的生長有一定的促進(jìn)作州,是因?yàn)榇娴鞍踪|(zhì)表達(dá)過程中,通過PLP補(bǔ)救途徑,PdxK激酶將PL磷酸化形成PLP,促進(jìn)GAD的折疊,一定程度上有利于菌體生長。隨著發(fā)酵時(shí)問的延長,南于PLP穩(wěn)定性差而失去作用,導(dǎo)致菌體的生長有所下降。由圖8可知,與GAD-0相比,GAD-PL酶活最高達(dá)到28.28U/mL,添加適量的PL可以提供給GAD未知濃度的PLP,從而提高GAD酶活。
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