氨基甲酸乙酯(Ethylcarbamate,EC)是一種在動(dòng)物乃至人體內(nèi)具有潛在致癌性的2A類致癌物,存在于多種發(fā)酵食品及酒精飲料中,如醬油、奶酪、葡萄酒、黃酒等。研究表明,尿素、瓜氨酸、氨甲酰磷酸、氰酸和焦碳酸二乙酸是EC形成的前體物,其中酵母菌和部分乳酸菌通過(guò)精氨酸代謝途徑產(chǎn)生的尿素和瓜氨酸是最重要的2種前體物。
酒類的瓜氨酸主要自精氨酸脫亞胺酶途徑代謝產(chǎn)生,在這一途徑中包括3種關(guān)鍵酶,分別為精氨酸脫亞胺酶(Argininedeimidase,ADI,EC3.5.3.6)、鳥(niǎo)氨酸氨甲?;D(zhuǎn)移酶(Ornithinetranscarbamoylase,OTC,EC2.1.3.3)和氨基甲酸激酶(Carbamatekinase,CK,EC2.7.2.2)。該途徑將精氨酸水解,最終轉(zhuǎn)化為鳥(niǎo)氨酸、氨和二氧化碳。
目前關(guān)于鳥(niǎo)氨酸氨甲酰轉(zhuǎn)移酶的研究較少,主要集中在人體內(nèi),由于是肝臟尿素循環(huán)的必需酶,因此OTC酶的缺失常導(dǎo)致嗜睡、嘔吐、精神發(fā)育遲緩等癥狀,同時(shí)OTC的缺失與否也可作為肝細(xì)胞癌的早期診斷指標(biāo)之一。根據(jù)之前的研究發(fā)現(xiàn),OTC與氨基甲酸乙酯的形成呈負(fù)相關(guān)性,即OTC的表達(dá)對(duì)EC的形成有抑制作用,然而OTC與EC的直接關(guān)聯(lián)性未見(jiàn)研究報(bào)道。
短乳桿菌是一類革蘭氏陽(yáng)性兼性厭氧菌,在含碳水化合物的動(dòng)物、植物發(fā)酵產(chǎn)品以及溫血類動(dòng)物的消化系統(tǒng)中十分常見(jiàn),作為一般認(rèn)為安全(Generallyrecognizedassafe,GRAS)的食品級(jí)微生物,在食品、工業(yè)、農(nóng)牧業(yè)及醫(yī)藥等領(lǐng)域中亦擁有重要的應(yīng)用價(jià)值。挖掘益生性乳酸菌源的酶類是目前人們的關(guān)注點(diǎn)之一。
本研究以短乳桿菌中的鳥(niǎo)氨酸氨甲?;D(zhuǎn)移酶為對(duì)象,通過(guò)基因克隆表達(dá)手段和Ni-NTA純化方法,獲得大量高純度的OTC酶,在黃酒發(fā)酵的不同階段直接添加到酒體中,研究其與EC之間的相互作用,為挖掘其潛在的工業(yè)應(yīng)用價(jià)值奠定基礎(chǔ)。
短乳桿菌(Lactobacillusbrevis)和質(zhì)粒pET28a由本實(shí)驗(yàn)室保存,大腸桿菌(Escherichiacoli)BL21(DE3),全試金公司。細(xì)菌基因組提取試劑盒、質(zhì)粒DNA提取試劑盒、PCR產(chǎn)物回收試劑盒、瓊脂糖凝膠回收試劑盒、Ni-NTA瓊脂糖樹(shù)脂、L-精氨酸、L-瓜氨酸、DL-鳥(niǎo)氨酸、茚三酮、異丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)、硫酸卡那霉素(Kan),生工生物工程(上海)股份有限公司;T4DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶BamHI、SalI,TaKaRa公司;麥曲、酒藥,浙江塔牌黃酒公司。
短乳桿菌OTC酶的正向引物序列為:5’-cgcggatccATGACTAAGGATTTTCGGGAAAATGTA-3’(下劃線為BamHI識(shí)別序列),反向引物序列為:5’-acgcgtcgacTTAAGCTCGTGGAATGAATAAGTTACCT-3’(下劃線為SalI識(shí)別序列)。以短乳桿菌的基因組DNA為模板進(jìn)行基因擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳驗(yàn)證后進(jìn)行純化。
采用限制性內(nèi)切酶BamHI和SalI分別對(duì)短乳桿菌OTC基因片段和載體pET-28a進(jìn)行雙酶切。酶切產(chǎn)物經(jīng)試劑盒回收后,連接并轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,涂布在含卡那霉素的LB平板上,經(jīng)菌落PCR驗(yàn)證后,篩選得到陽(yáng)性克隆,并測(cè)序鑒定目的基因序列。
挑取陽(yáng)性單菌落接種于5mL含卡那霉素的LB培養(yǎng)基中,于37℃,200r/min振蕩培養(yǎng)過(guò)夜。按1%(體積分?jǐn)?shù))接種量轉(zhuǎn)接于200mL的LB培養(yǎng)基中,繼續(xù)于37℃,200r/min振蕩培養(yǎng),至OD600nm達(dá)到0.6~0.8時(shí),加入異丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG),于25℃,180r/min誘導(dǎo)培養(yǎng)過(guò)夜。離心收集菌體后,加入30mL緩沖液(50mmol/LNaH2PO4,300mmol/LNaCl,20mmol/LImidazole,pH8.0)重懸菌體,隨后冰水浴超聲破碎細(xì)胞,于4℃,12000r/min離心20min,獲得上清液。參照Ni-NTA瓊脂糖樹(shù)脂的使用說(shuō)明方法,采用親和層析純化重組蛋白,隨后利用SDSPAGE檢測(cè)蛋白純度及分子質(zhì)量。
以0.8kg糯米為原料,30℃下浸米2d,高溫蒸煮后冷卻,加入160g麥曲和1.6g酒藥及0.96L水,攪拌均勻后于28℃發(fā)酵。以不作任何處理的自然發(fā)酵黃酒作為對(duì)照組(CK),在發(fā)酵第5天加入純化后的鳥(niǎo)氨酸氨甲?;D(zhuǎn)移酶(5D),在發(fā)酵第12天加入相同濃度的鳥(niǎo)氨酸氨甲?;D(zhuǎn)移酶(12D),分析比較發(fā)酵過(guò)程中EC及其相關(guān)代謝物的差異。
測(cè)定方法參照Fu等[3]的報(bào)道,樣品與0.1mL,1.5mol/L鹽酸和0.2mL,0.01mol/L占噸醇正丙醇溶液衍生后,通過(guò)高效液相色譜法檢測(cè)。以甲醇和水作為流動(dòng)相,熒光檢測(cè)器激發(fā)波長(zhǎng)233nm,發(fā)射波長(zhǎng)600nm,梯度洗脫進(jìn)樣。
尿素和瓜氨酸的檢測(cè)方法分別參照陳宜宜等和Boyde等的文獻(xiàn)所述,通過(guò)與顯色劑的顯色反應(yīng)來(lái)檢測(cè)發(fā)酵液中的含量。
取發(fā)酵液超聲15min破碎細(xì)胞,于4℃,12000r/min離心20min,取上清為原蛋白提取物。根據(jù)茚三酮顯色反應(yīng)來(lái)測(cè)定OTC酶活,蛋白含量則采用Bradford法進(jìn)行測(cè)定。本試驗(yàn)中OTC酶活定義為每分鐘水解1mg蛋白質(zhì)產(chǎn)生1μmol鳥(niǎo)氨酸所需要的酶量為1個(gè)酶活單位。
采用日本日立L-8900氨基酸分析儀進(jìn)行測(cè)定。檢測(cè)原理為采用茚三酮作為衍生劑與氨基酸衍生后檢測(cè)分析。前處理方法為:取50mL黃酒樣品,加0.1mol/L鹽酸溶液超聲振蕩5min,加5%磺酸水楊酸去除蛋白,離心后采用氮吹儀濃縮,加0.02mol/L鹽酸2mL,振蕩后過(guò)膜,上機(jī)檢測(cè)。
將8mL酒樣和0.2gNaCl加入頂空瓶中,50℃下磁力攪拌加熱15min后,將萃取頭插入頂空瓶中,繼續(xù)于50℃下加熱30min后進(jìn)樣。GC色譜條件:載氣為氮?dú)?,流速?mL/min,無(wú)分流進(jìn)樣;程序升溫:初始柱溫40℃,保持5min,以5℃/mL的速率升溫至230℃,保持10min。進(jìn)樣口溫度250℃,GC解析時(shí)間2.5min。質(zhì)譜條件:電子轟擊離子源(EI)電子能量為70eV,離子源溫度250℃,接口溫度250℃,檢測(cè)口電壓為350V。掃描方式為全掃描,質(zhì)量范圍為35~350。
相對(duì)于感官鑒評(píng)方法,電子舌實(shí)現(xiàn)了酸、苦、澀、咸、鮮和甜味等基本味及回味的數(shù)字化評(píng)價(jià),具有結(jié)果穩(wěn)定且受外界影響小的優(yōu)點(diǎn)。
取適量待測(cè)樣品置于電子舌測(cè)試杯中,對(duì)其酸、甜、苦、澀、咸、鮮等基本味及回味進(jìn)行測(cè)定,不同味覺(jué)與傳感器一一對(duì)應(yīng),所有傳感器分別在參比溶液和黃酒樣品中浸泡、洗滌,測(cè)得電勢(shì)值Vr和Vs,通過(guò)對(duì)Vs-Vr值的計(jì)算,即可對(duì)黃酒的酸、甜、苦、澀、咸和鮮味等基本味和回味進(jìn)行分析。每個(gè)樣品重復(fù)測(cè)試4~5次,為減少系統(tǒng)誤差,選后3次納入數(shù)據(jù)分析。
每個(gè)試驗(yàn)重復(fù)3次,采用SPSS軟件對(duì)數(shù)值進(jìn)行差異顯著性分析。
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